Школа 21 кольцово официальный сайт: МБОУ “Биотехнологический лицей № 21”: Главная страница

Сообщить о травле и Позитивное действие

S.W.A.G. Комната

Школа 21 заключила партнерское соглашение с Zone6ix для поддержки академических, поведенческих целей и целей посещаемости учащихся. Цель этого партнерства состояла в том, чтобы создать стимулы для наших студентов, которые привели бы к тому, что они продолжали бы добиваться положительных результатов в этих областях, а гордость, вызванная их успехом, помогла бы противостоять негативным влияниям, существующим в нашем обществе.

Координатор учителей школы 21 Шакира Фэйрфакс и Джастин Уимберли, генеральный директор Zone6ix, превзошли все ожидания, создав нашу комнату SWAG (Студенты с академическими целями). Эта высокотехнологичная комната позволяет нашим ученикам играть в игры, Tic/Toc, Air Hockey, Basketball, Pac Man и многое другое.

Учащиеся, показавшие рост в этих областях, сначала будут посещать комнату во время обеденного перерыва, однако администрация разрабатывает планы использования по завершении послешкольных и летних программ.

Неделя праздничного духа 2022

Государственные школы Патерсона

SuccessMaker

Библиотека (Александрия)

Школа 21 стремится к тому, чтобы все учащиеся добивались личного и академического успеха. Или учащиеся будут ответственными гражданами и учениками на протяжении всей жизни, которым будут привиты навыки 21 века, необходимые для достижения успеха в старшей школе и за ее пределами.

Познакомить наших студентов с надежной учебной программой, которая расширит глобальную и многокультурную перспективу, чтобы они твердо стояли на пути к своей мечте и не терпели поражения; усиливая нашу тему, чтобы быть “Завоеватели” и девиз нашей школы “Парящие орлы”

322  10th Avenue
Патерсон, Нью-Джерси 07514
(973) 321-0210 Телефон | (949) 555-0000 Факс

Государственные школы Патерсона      

90 Delaware Avenue, Paterson, NJ 07503

(973) 321-1000 Телефон

Мониторинг жизнеспособного вируса атипичной пневмонии в атмосферном воздухе

• Список журналов
• Коллекция Elsevier для чрезвычайных ситуаций в области общественного здравоохранения
• PMC7129584

Атмос Окружающая среда (1994 г. ). 2004 июль; 38 (23): 3879–3884.

Published online 2004 May 21. doi: 10.1016/j.atmosenv.2004.03.044

, ^{a, *} , ^b , ^b , ^b , ^b , ^B , ^B , ^B , ^B , ^C , ^C и ^D

Авторская информация Примечания Примечания Capyright и лицензия Disclail

Информация о статье. Статья. Статья. Статья и лицензия Disclail

Информация о статье. Статья. Статья и лицензия Disclail

Авторская информация. Статья. Статья и лицензия Disclail

. 5624) 1394; Nature 423 (2003) 240; Science 300 (5627) 1966), разработка надежных процедур мониторинга переносимых по воздуху вирусов была вызвана исключительной безотлагательностью и в настоящее время пользуется большим спросом (In: Cox, C.S., Wathers, CM (Eds.), Справочник по биоаэрозолям, Lewis Publishers, Boca Raton, FL, 19. 95, стр. 247–267). На основе метода инженерного контроля (Aerosol Science and Technology 31 (1999) 249; 35 (2001) 852), который ранее применялся для удаления частиц из газоносителей, разработан новый персональный пробоотборник биоаэрозолей. Загрязненный воздух барботируется через пористую среду, погруженную в жидкость, и впоследствии распадается на множество очень маленьких пузырьков. Эти пузырьки поглощают частицы и, таким образом, эффективно удаляют их. В текущем исследовании изучается возможность мониторинга жизнеспособного вируса SARS, переносимого по воздуху. Было установлено, что естественный распад такого вируса в собирательной жидкости составил около 0,75 и 1,76 lg за 2 и 4 часа непрерывной работы соответственно. Теоретическая скорость восстановления микробов выше 55 и 19% рассчитаны для 1 и 2 ч работы соответственно. Таким образом, новый метод отбора проб прямого ненасильственного сбора жизнеспособного переносимого по воздуху вируса SARS в соответствующую жидкую среду был признан подходящим для мониторинга такого чувствительного к стрессу вируса.

Ключевые слова: SARS, Биоаэрозоль, Индивидуальный мониторинг, Жизнеспособные микроорганизмы, Эффективность сбора

В связи с недавними террористическими атаками в США и во всем мире, исследования вопросов, связанных с биотерроризмом, стали чрезвычайно актуальными. Некоторые недавние проблемы, связанные с атипичной пневмонией, еще больше подкрепили эту концепцию (Lipsitch et al., 2003; Fouchier et al., 2003). Растущая озабоченность по поводу воздействия биоаэрозолей на человека создала потребность в передовых, более надежных и эффективных методах мониторинга для обнаружения, идентификации и подсчета переносимых по воздуху биологических частиц для контроля воздействия, оценки средств контроля или выявления потенциально опасных условий (Lacey and Dutkiewicz, 19).94; Комтуа и Изард, 1999). Требования к идеальному пробоотборнику биоаэрозоля были описаны Macher (1997). Среди прочего, поддержание высокой биологической эффективности считается одним из основных требований для эффективной работы пробоотборников биоаэрозолей. Индивидуальное воздействие биоаэрозолей лучше всего можно оценить с помощью персональных аэрозольных мониторов, поскольку эти пробоотборники отслеживают влияние моделей времени и активности человека. Что касается личного отбора проб, идеальный биоаэрозольный монитор должен быть компактным, позволять специфическую идентификацию частиц и сохранять высокую физическую и биологическую эффективность в течение продолжительных периодов времени (Macher, 19).99; Крук, 1995).

На основе метода технического контроля, который ранее применялся для удаления небиологических частиц из газовых носителей (Agranovski et al (1999), Agranovski et al (2001)), был разработан новый персональный пробоотборник биоаэрозолей (см. ). Детальный эскиз устройства также представлен в нашей предыдущей работе (Agranovski et al., 2002b). Пробоотборник состоит из внутреннего (внутренний диаметр 45 мм) и внешнего корпуса с пористым фильтром, закрепленным на дне внутреннего корпуса. Пятьдесят миллилитров собирающей жидкости помещают во внешний корпус пробоотборника, полностью погружая фильтр после сборки прибора на расстоянии 15 мм от дна корпуса. На задней стенке пробоотборника расположен зажим в виде ручки для крепления прибора к лацкану пользователя. Портативный вакуумный насос подключается к пробоотборнику для обеспечения необходимого рабочего расхода 4 л мин ⁻¹ . Форма воздухозаборника обеспечивает незначительные потери собранных биоаэрозолей вдоль стенок пробоотборника до достижения уровня собирающей жидкости (Agranovski et al., 2002b). Также конструкция пробоотборника гарантирует отсутствие утечек и разливов собираемой жидкости при отборе проб даже при динамичной деятельности человека. Принцип действия основан на барботировании загрязненного воздуха через фильтр, погруженный в слой жидкости, который впоследствии распадается на множество очень мелких пузырьков. Эти пузырьки поглощают частицы и, таким образом, эффективно удаляют их. Предыдущее исследование производительности такого процесса показало, что устройство способно обеспечить КПД выше 9.5% для диапазона размеров частиц от 0,01 до 3,0 мкм (Аграновский и др. , 2001). Другой очень важной особенностью пробоотборника является возможность достижения такой высокой эффективности при низкой скорости газа до 0,5 м с ^-1 , что минимизирует физическую нагрузку на собранные устройством микробы. Рабочие характеристики нового пробоотборника оценивались для 8-часового непрерывного отбора проб Pseudomonas fluorescens и Bacillus subtilis var из воздуха. нигер бактерии и грибковых спор Aspergillus versicolor (Agranovski et al (2002a), Agranovski et al (2002b)). Установлено, что жизнеспособность отобранных микроорганизмов оставалась высокой даже после длительного отбора проб: степень восстановления стресс-чувствительных грамотрицательных бактерий P. fluorescens составила 61±20%; для стрессоустойчивых бактерий B. subtilis и спор грибов A. versicolor она составила 95±9% и 97±6% соответственно.

Открыть в отдельном окне

Новый персональный пробоотборник для мониторинга жизнеспособных вирусов, передающихся по воздуху.

Глобальная озабоченность, связанная с вирусом SARS, вызывает необходимость разработки надежных процедур мониторинга этого высокопатогенного микроорганизма (Rota et al., 2003; Lipsitch et al., 2003). Установлено, что SARS — это коронавирус (Marra et al., 2003; Guy et al., 2000), который, как и большинство коронавирусов, очень чувствителен к физическим и биологическим нагрузкам. Такая высокая чувствительность исключила бы возможность использования большинства доступных в настоящее время методов мониторинга биоаэрозолей из-за их жестких режимов работы или сильного высыхания собранных материалов (Wang et al., 2001). Поскольку такие негативные эффекты не характерны для нового устройства (пробоотборник способен работать на низкой скорости, что обеспечивает щадящий сбор материала непосредственно в жидкость), было принято решение опробовать новую методику мониторинга жизнеспособного вируса ТОРС, переносимого по воздуху. Учитывая очень высокую физическую собирающую способность прибора (выше 96% для размера частиц вируса ТОРС) (Agranovski et al. , 2001), основное внимание уделялось вопросу, связанному с возможностью поддержания минимально возможной скорости естественного распада собранного вируса в жидкости в течение всего периода сбора. не менее двух часов непрерывной работы.

Эксперименты проводились на установке PC4 с НЕРА-фильтрами, установленными на трубопроводе, соединяющем пробоотборник и вакуумный насос, для предотвращения загрязнения оборудования. Для экспериментов каждое устройство было заполнено 50 мл ∼10 ⁴ ТКИД ₅₀ мл ^-1 (Tissue Culture Infectious Dose) концентрированной суспензии вируса SARS. Штамм Франкфурт 1 вируса атипичной пневмонии был любезно предоставлен д-ром Дёрром и д-ром Рабенау из Института медицинской вирусологии университетской больницы Франкфурта (Франкфурт, Германия). Пробоотборники, заправленные вирусными суспензиями, работали непрерывно, всасывая чистый воздух со скоростью 4 л/мин 90 153 -1 90 154 (его стандартная скорость отбора проб) в течение 4 ч. Температура чистого воздуха составляла 24°С, относительная влажность около 55%. Один миллилитр суспензии собирали из пробоотборника через 0, 2 и 4 ч работы. Десятикратные серийные разведения анализировали титрованием на клетках Vero. Культура клеток Vero, полученная из почки африканской зеленой мартышки, получена из коллекции «Flow Laboratories» и культивирована в НИЦ ВБ «Вектор». Серийные разведения абсорбирующей жидкости инокулировали на конфлюэнтные монослои клеток Vero в лунках по 9 л.6-луночные планшеты и инкубировали в течение 60 мин при 37°C. Инокулированные клеточные культуры поддерживали с помощью RPMI 1640 с добавлением 1% эмбриональной телячьей сыворотки (Gibco BRL, Гранд-Айленд, Нью-Йорк). Инокулированные клеточные культуры ежедневно исследовали на предмет цитопатического действия вируса SARS на клетки Vero. Во всех экспериментах первое наблюдаемое разрушение монослоя (характерное округление клеток Vero) появлялось после 30 ч инкубации. Через 48 ч разрушалось до 50% монослоя, а через 60 ч все клетки округлялись и разрушалось более 80% монослоя (см. полную процедуру титрования коронавируса у Guy et al. , 2000). ОТ-ПЦР использовали для контроля репродукции вируса в клетках Vero. Амплификацию (Drosten et al., 2003) проводили с праймерами BNI в S и BNI в As (любезно предоставлено Институтом тропической медицины Бернхарда Нохта, Гамбург, Германия). Результаты были рассчитаны в TCID ₅₀ мл ^-1 и скорость естественного распада была получена как отношение концентрации (TCID ₅₀ мл ^-1 ) в определенное время по исходной концентрации ОРВИ в жидкости в начале эксперимента.

Было проведено три экспериментальных прогона с тремя разными устройствами для определения воспроизводимости результатов и различий между пробоотборниками. Для исследования поведения скорости естественного разложения в различных средах для приготовления вирусных суспензий использовали две жидкости; стерильная вода и жидкость для ухода за микроорганизмами. Поддерживающая жидкость, приготовленная из раствора Хенкса, содержащего 2% объемного содержания инактивированной бычьей сыворотки, 100 ЕД/мл ^-1 пенициллина и 100 мкг мл ^-1 стрептомицина использовали для создания условий для минимально возможной скорости естественного распада. Чтобы избежать сильного пенообразования, которое могло бы неблагоприятно повлиять на процесс физического барботажа, в собирающую среду добавляли пеногаситель Antifoam A (Sigma Chemical Company, Сент-Луис). Некоторые последующие наблюдения подтвердили, что жидкость для поддержания вирусов с добавлением противовспенивателя не способствовала чередованию процесса физического барботирования без образования избыточной пены. Также, как было подтверждено измерениями по разработанной ранее методике (Аграновский и др., 1999), физическая эффективность пробоотборника, заправленного жидкостью для поддержания вируса, была такой же, как и пробоотборника, работающего со стерильной водой (>95%), при этом повышения гидродинамического сопротивления устройства не обнаружено.

Было проведено по три эксперимента для каждой стерильной воды и жидкости для поддержания вируса, и результаты разложения вируса SARS показаны на . Как видно, естественная гибель микроорганизмов за первые 2 ч работы составила в среднем около 0,75 и 1,25 lg для вируссодержащей жидкости и воды соответственно. Даже после 4 часов пробега вирусный распад в поддерживающей жидкости составлял в среднем 1,76 lg. С другой стороны, гораздо более высокая скорость разложения вируса атипичной пневмонии (2,58 lg) наблюдалась при барботировании через вирусную суспензию в стерильной воде. Принимая во внимание очень чувствительный к стрессу характер вируса атипичной пневмонии, эти результаты показывают, что устройство, заполненное жидкостью для поддержания вируса, способно обеспечить относительно низкий уровень микробного распада и может быть оценено для мониторинга таких микроорганизмов в воздушной среде.

Table 1

SARS virus decay due to the bubbling process as measured during the 4-h continuous operation

Number of experiment	Initial concentration (lg TCID 50  ml −1 )		Concentration after 2 h, (lg TCID 50  ml −1 )		Concentration after 4 h, (lg TCID 50  ml −1 )
	Sterile water	Hank’s solution	Sterile water	Hank’s solution	Sterile water	Hank’s solution
1	4. 25±0.50	4.00±0.50	3.00±0.25	3.50±0.25	1.75 ±0.25	2.25±0.50
2	4.50±0.75	4.25±0.75	3.25±0.25	3.50±0.50	1.50±0.50	2.50±0.75
3	4.25±0.75	4.25±0.75	3.00±0.50	3.25±0.75	2.00±0.50	2.50±0.50
Average	4.33±0.67	4. 17±0.67	3,08 ± 0,33	3,42 ± 0,50	1,75 ± 0,42	2,41 ± 0,58

Открытый в отдельном окне

. По итоге ARANARIRIRIRE. По итоге ARANARIRIRE. По итоге ARANARIRER IRANARIRIRE. По итоге ARANARIRIRE. По итоге ARANARIRE. По итоге ARANARIRE. , 2002б). Расхождение между всеми тремя экспериментальными запусками с использованием жидкости для поддержания вируса было минимальным и не превышало 0,25 lg. Это очень важно, так как, принимая во внимание отсутствие какой-либо эталонной методики для такого измерения, это был единственный параметр, который можно было использовать для оценки эффективности пробоотборника при мониторинге жизнеспособного вируса атипичной пневмонии.

Очень важной характеристикой любого биоаэрозольного монитора является скорость микробного восстановления устройства для конкретного интересующего микроорганизма. Ввиду невозможности прямого измерения степени извлечения вируса ТОРС (разрешение на аэрозолизацию этого микроорганизма на данном этапе не выдавалось) пробоотборником теоретически этот показатель оценивался по следующей формуле:

R(t)=ND(t )×E,

где R ( t ) скорость восстановления микробов через определенный интервал времени с начала процедуры мониторинга, ND( t ) — соответствующая скорость естественного распада за тот же интервал времени, а E — физическая эффективность улавливания частиц размером с интересующий микроорганизм. Для определения точного значения физической эффективности устройства по улавливанию частиц размера вируса ТОРС было проведено микроскопическое исследование для выяснения физических размеров такого микроорганизма.

ПЭМ-фотография вируса атипичной пневмонии, использованная в экспериментах, показана на рис. . Вирус атипичной пневмонии инокулировали на конфлюэнтные монослои клеток Vero в 25 см ² колбы и инкубировали в течение 60 мин при 37°C. Инокулированные клеточные культуры поддерживали с помощью RPMI 1640 с добавлением 1% эмбриональной бычьей сыворотки. Супернатанты культур клеток исследовали на наличие вируса с помощью электронной микроскопии. Сетки, покрытые формваром, помещали на 7 минут на капли супернатанта клеточной культуры. Отрицательное окрашивание проводили 2% фосфорно-вольфрамовой кислотой (PTA, pH 7,4) в течение 7 мин, PTA (pH 6,0) в течение 1–7 мин, 2% молибдатом аммония (AMo, pH 6,5) в течение 1 мин, 2% метиламин-вольфраматом (MAT). , pH 5,8) в течение 1 мин и 1% водный уранилацетат (UAc) в течение 5–45 с. Образцы исследовали на трансмиссионном электронном микроскопе (JEM-100S, Jeol, Япония) в диапазоне увеличения 10 000–60 000. При исследовании супернатанта клеточной культуры выявлены вирусные частицы округлой формы диаметром 80–90 нм. Частицы имели характерные для коронавирусов длинные шипы на поверхности. Физическая эффективность устройства для сбора частиц NaCl размером 80-90 нм была измерена ранее (Фильтр ♯1 в Agranovski et al. , 2001) и была получена величина 97%.

Открыть в отдельном окне

ПЭМ-фотография вируса атипичной пневмонии, использованного в экспериментах.

Затем была оценена теоретическая скорость восстановления для нового персонального пробоотборника, и результаты представлены в вместе с связанными со временем результатами естественного распада вируса атипичной пневмонии во время барботирования через жидкость для поддержания вируса, которые обычно обсуждались ранее. Как видно из рисунка, теоретическая скорость восстановления вируса атипичной пневмонии была выше 75% в течение первых 30 мин мониторинга. Эта цифра выглядит очень многообещающе для использования нового устройства для коротких периодов времени отбора проб для таких микроорганизмов. Он снижается только на 20% в течение следующих 30 мин и остается выше 55% в течение первого часа мониторинга. Скорость восстановления была все еще очень высокой в ​​течение следующего часа работы и остается выше 19% за этот период. Даже после 3 ч отбора проб степень извлечения остается на уровне 5 %, что при высокой исходной концентрации микроорганизмов в окружающем воздухе достаточно для определения жизнеспособного аэрозольного вируса ТОРС в окружающей среде. Отметим, что приведенные выше расчеты основаны на том факте, что все вирусные частицы достигли устройства в начале процедуры отбора проб и находились в барботажном режиме на протяжении всей работы пробоотборника. В действительности микроорганизмы собираются устройством в течение всего времени отбора проб, что сводит к минимуму воздействие на более поздние микроорганизмы и, соответственно, обеспечивает более высокую степень извлечения по сравнению с теоретически рассчитанной.

Открыть в отдельном окне

Скорость естественного распада и восстановления вируса ТОРС в течение до 4 часов процедуры мониторинга.

Другой очень важный вывод был основан на том факте, что общее количество вирусных частиц (живых и мертвых) в жидкости для поддержания вируса не изменилось в течение всей процедуры отбора проб. Это указывает на то, что даже в случае некоторого разложения собираемую жидкость можно проанализировать с помощью метода RT-PCR (Drosten et al., 2003) для качественного определения наличия вируса SARS в окружающем воздухе. Раннее и быстрое обнаружение этого чрезвычайно патогенного вируса в общественных местах чрезвычайно важно, так как все соответствующие действия могут быть предприняты до массового заражения лиц, подвергшихся воздействию атипичной пневмонии.

В целом, новый метод отбора проб прямого сбора вируса атипичной пневмонии в поддерживающую жидкость оказался пригодным для обнаружения и подсчета жизнеспособных вирусов атипичной пневмонии, переносимых по воздуху. Это открывает уникальную и революционную возможность проводить такой мониторинг даже для такого чувствительного к стрессу микроорганизма, как вирус атипичной пневмонии. Очевидно, что этот метод был бы также применим для мониторинга устойчивых и высокопатогенных вирусов, случайно или преднамеренно распространяющихся в окружающем воздухе.

Проект частично поддержан грантом 1Р21 РР 17026-01А1 Национального центра исследовательских ресурсов.

Авторы выражают благодарность сотрудникам лаборатории ГНЦ ВЕКТОР за техническую поддержку в подготовке и проведении рутинных лабораторных экспериментов. Особая благодарность Виноградову И. за техническую поддержку в получении ПЭМ фотографии вируса атипичной пневмонии.

• Аграновски И., Миоджо Т., Брэддок Р. Д. Удаление аэрозолей барботированием через пористую среду. Аэрозольная наука и техника. 1999;31:249–257. [Google Scholar]
• Аграновский И., Миоджо Т., Брэддок Р. Д. Сравнительное исследование характеристик девяти фильтров, используемых для фильтрации аэрозолей барботированием. Аэрозольная наука и техника. 2001; 35: 852–859. [Google Scholar]
• Аграновский И., Аграновский В., Гриншпун С., Репонен Т., Виллеке К. Сбор переносимых по воздуху микроорганизмов в жидкость барботированием через пористую среду. Аэрозольная наука и техника. 2002; 36: 502–509. [Google Scholar]
• Аграновский И., Аграновский В., Репонен Т., Виллеке К., Гриншпун С. Разработка и оценка нового персонального пробоотборника жизнеспособных микроорганизмов в воздухе. Атмосферный. Среда. 2002;36:889–898. [Google Scholar]
• Комтуа П. , Изард С. Аэробиология: взросление в новом тысячелетии. Аэробиология. 1999; 15: 259–266. [Google Scholar]
• Крук Б. Инерционные пробоотборники: биологическая перспектива. В: Cox CS, Wathes CM, редакторы. Справочник по биоаэрозолям. Издатели Льюиса; Бока-Ратон, Флорида: 1995. стр. 247–267. [Google Scholar]
• Дростен С., Гюнтер С., Прейзер В., Ван дер Верф С., Бродт Х.-Р., Беккер С., Рабенау Х., Паннинг М., Колесникова Л., Фушье Р.А., Бергер А., Бургьер А.-М., Чинатль Дж., Эйкманн М., Эскриу Н., Грюна К., Крамме С., Манугерра Дж.-К., Мюллер С., Риккертс В., Штюрмер М., Вит С., Кленк Х.-Д., Остерхаус А.Д.М.Е., Шмитц Х., Дёрр Х.В. Выявление нового коронавируса у больных с тяжелым острым респираторным синдромом. Медицинский журнал Новой Англии. 2003;348:1967–1976. [PubMed] [Google Scholar]
• Фушье Р.А.М., Куикен Т., Шуттен М., ван Амеронген Г., ван Доорнум Г.Дж.Дж., ван Ден Хуген Б., Пейрис М., Лим В., Штёр К., Остерхаус А.М.Е. Этиология: постулаты Коха выполняются для вируса атипичной пневмонии. Природа. 2003; 423:240. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
• Guy J.S., Breslin J.J., Breuhaus B., Vivrette S., Smith L.G. Характеристика коронавируса, выделенного от жеребенка, страдающего диареей. Журнал клинической микробиологии. 2000;38(12):4523–4526. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
• Лейси Дж., Дуткевич Дж. Биоаэрозоли и профессиональные заболевания легких. Журнал науки об аэрозолях. 1994; 25:1371–1404. [Google Scholar]
• Липсич М., Коэн Т., Купер Б., Робинс Дж. М., Ма С., Джеймс Л., Гопалакришна Г., Чу С. К., Тан К. С., Самор М. Х., Фисман Д., Мюррей М. Динамика передачи и контроль тяжелых острых респираторных заболеваний синдром. Наука. 2003; 300 (5627): 1966–1970. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
• Махер Дж. Оценка производительности пробоотборника биоаэрозоля. Прикладная гигиена труда и окружающей среды. 1997;12:730–736. [Google Scholar]
• Махер, Дж. (ред.), 1999 г. Биоаэрозоли: оценка и контроль. Американская конференция государственных промышленных гигиенистов, Цинциннати, Огайо.
• Марра М.А., Джонс С.Дж.М., Астелл К.Р., Холт Р.А., Брукс-Уилсон А., Баттерфилд Ю.С.Н., Хаттра Дж., Асано Дж.К., Барбер С.А., Чан С.Ю., Клотье А., Кафлин С.М., Фриман Д., Гирн Н., Гриффин О.Л., Лич С.Р., Майо М., Макдональд Х., Монтгомери С.Б., Пандох П.К., Петреску А.С., Робертсон А.Г., Шейн Дж.Е., Сиддики А., Смайлус Д.Е., Стотт Дж.Е., Ян Г.С., Пламмер Ф., Андонов А., Арцоб Х., Бастьен Н., Бернард К., Бут Т.Ф., Боунесс Д., Чуб М., Дребот М., Фернандо Л., Флик Р., Гарбатт М., Грей М., Гролла А., Джонс С., Фельдманн Х., Мейерс А., Кабани А., Ли И., Норманд С., Строэр У., Типплс Г.А. , Tyler S, Vogrig R, Ward D, Watson B, Brunham RC, Krajden M, Petric M, Skowronski DM, Upton C, Roper RL Последовательность генома коронавируса, связанного с SARS. Наука. 2003;300(5624):1399–1404. [PubMed] [Google Scholar]
• Рота П.А., Оберсте М.С., Монро С.С., Никс В.А., Кампаньоли Р., Айсеногл Дж.П., Пеньяранда С.